专利名称：一种检测血清样本中西尼罗抗体的蛋白悬浮芯片及其制备方法和使用方法
技术领域：
本发明涉及一种检测血清样本中西尼罗抗体的蛋白悬浮芯片及其制备方法和使 用方法。
背景技术：
西尼罗病毒病是由西尼罗病毒(West Nile Virus, WNV)引起的传染�。且恢� 人兽共患病。人类感染西尼罗病毒后并不互相传播，通常为隐性感染.潜伏期为3 15 天，大部分感染者症状轻微，伴有发热，头痛，喉咙痛，背痛，肌肉疼痛，关节痛，疲劳，结膜 炎，皮疹，淋巴结肿大，纳差，腹痛，腹泻及呼吸道症状等。对于老年人和儿童可能引起高热 (^ 40°C )，剧烈头痛及中枢神经系统症状体征，如颈项强直，昏睡，昏迷，抽搐，麻痹等，甚 至引起死亡。免疫学方法酶联免疫实验(ELISA)中利用抗原与抗体特异性反应来检测抗原或 抗体主要有由双抗原夹心测抗体、双抗体夹心测抗原、竞争法、间接法等。间接法测抗体 的原理是特异性抗原结合到固相载体上，然后和待检血清中的相应抗体结合形成免疫复合 物，洗涤后再加酶标记抗体与免疫复合物中的抗体结合形成酶标记抗体-抗体-固相抗原 复合物，加底物显色，判断抗体含量。悬浮芯片(suspension array)也称液相芯片，是20世纪70年代美国Luminex公 司研制出的新一代生物芯片技术，利用带编码的微球体作为载体，流式细胞仪作为检测平 台，对核酸、蛋白质等生物分子进行大规模测定。目前，该技术已广泛应用于免疫分析、核酸 研究、酶学分析、抗体筛选及受体与配体的识别分析等领域。目前发展的悬浮芯片主要是基于实验室检测方法的建立和方法评价及优化，以缩 短检测时间，降低方法的检测成本。但是悬浮芯片方法是否能够检测人血清中的西尼罗抗 体，其定量检测能力如何，尚缺乏模型和评价。
发明内容
本发明的目的在于提供一种检测血清样本中西尼罗抗体的蛋白悬浮芯片，该芯片 包括编码微球，作为包被编码微球抗原的西尼罗E蛋白、生物素标记的二抗和SPA作为捕 获抗体，链亲和素-藻红蛋白(SA-PE)及相关缓冲溶液。本发明提供上述检测西尼罗抗体的蛋白悬浮芯片的制备方法，该方法具体为在 相关缓冲溶液中，编码微球用西尼罗E蛋白抗原包被、用生物素标记的检测物为羊抗兔IgG 或/和Biotin-SPA、用链亲和素-藻红蛋白(SA-PE)作为信号检测物，所述编码微球优选 025号编码微球。本发明提供一种采用蛋白悬浮芯片检测血清样样本中西尼罗抗体的间接免疫学 检测方法，该方法采用间接法检测抗体的免疫学检测原理，具体为在检测过程中所有反应 可在96孔滤板上或在微量离心管中进行，其中包括下列步骤(1)将西尼罗E蛋白抗原作为捕获抗原来包被编码微球；(2)每孔或管中加入含有已包被捕获抗原，即西尼罗E蛋白抗 原的编码微球的工作溶液，用清洗液清洗；(3)加入待测血清样品，孵育后清洗；(4)加入用 生物素化的检测物，孵育后清洗；(5)加入链亲和素-藻红蛋白(SA-PE)，孵育后清洗，(6) 加入检测缓冲液后混勻，(7)用悬浮芯片系统读取MFI数值(即平均荧光强度)并分析数 据判定检测结果阴性或阳性。该方法中，采用生物素标记的SPA作为检测物，并且其与西尼罗E蛋白组 合组成间接法检测体系；包被编码微球的捕获抗原西尼罗E蛋白抗原用量为0. 1 240 μ g/1. 25 X IO6个编码微球或0. 02 960ng/2500 5000个微球/测试，标记检测抗体 羊抗兔IgG的生物素为羧基活性的生物素。步骤(4)中采用2mg/mL生物素化的检测抗体 Bioin-SPAWl 2500稀释作为检测物进行检测。本发明还提供一种采用蛋白悬浮芯片定 量检测血清样本中西尼罗抗体的方法，该方法包括下列步骤(1)加入的阳性检测样品或 标准品经4倍梯度倍比系列稀释，(2)将系列稀释样品在悬浮芯片系统中检测读取对应荧 光值(MFI) ； (3)制作样品浓度对应MFI值的剂量-反应标准曲线，(4)用分析软件拟合剂 量-反应曲线和方程，(5)根据剂量-反应曲线可判定方法的动态检测范围，未知浓度样品 可根据剂量_反应方程判断检测样品的浓度。悬浮芯片的基本原理是利用聚苯乙烯(polystyrene)所制作的微球，包覆不同比 例的红光及红外光发色剂，而产生100种不同比例颜色，作为100种独特的色彩编号，每颗 微球大小约5. 6 μ m，可依不同研究目的如免疫分析、核酸研究、酶分析、受体和配体识别分 析等，并根据不同研究目的而标定特定抗体、核酸探针及各种受体探针。其在以下悬浮芯片 系统中完成检测，标记探针的微球与待测物在96孔板中进行反应，反应后，利用机器自动 将反应液吸起并通过一微细管检测通道，每次仅允许一个微球通过检测通道。检测通道中 设有两道激光，一道为红色，激发微球基质中的颜色，识别微球分类编码以确定检测项目； 一道为绿色，激发报告分子的颜色，记录信号强弱以检测待测物的含量。当待测样本与特定 微球的探针吸附在一起时，两道激光所激发的光都可被检测到。而若样本中不含该标的物， 则仅有微球中的激发光可被检测到。再通过机器与计算机自动统计分析两道激光所激发的 微球种类与数量，从而判定待测样本中有几种测试目标物在其中，得知测试样本中有无待 测病原存在，或同时存在有几种至数十种病原。悬浮芯片技术由于利用微球在溶液中反应， 克服了片膜芯片在大分子检测时受表面张力、空间效应等对反应动力学的影响，同时利用 激光检测技术，大大提高了样品检测的准确性和重复性，具有优于片膜芯片的操作简便、重 复性好等特点。本发明人经过大量试验和深入的研究，对西尼罗抗体的蛋白悬浮芯片制备及其检 测条件作了实质性的改进和创新，其具有下列优点1、抗原包被量的改进西尼罗E蛋白抗原的包被量是成功检测的关键，本发明对包被微球的抗原包被量 进行实质性优化使血清样本的检测效果非常良好，并且包被悬浮芯片所需的抗原包被量很 低，本发明的抗原包被量为0. 1 240 μ g/1. 25 X IO6个编码微球或0. 02 960ng/2500 5000个微球/测试，而传统免疫学ELISA方法的包被量为1 μ g/测试。2、生物素标记的改进通常，标记抗体需要使用过量的生物素。理论上讲，在检测过程中，过量的生物素因未标记上抗体而不被微球上结合捕获抗体的抗体连接，清洗时被抽滤掉，不会与随后加 入的SA-PE反应，不影响检测。但在实际检测过程中，偶尔遇到过检测信号可能过高的现 象，出现假阳性，因此建议生物素标记抗体后，尽量去除多余的生物素。以标记2mg/mL的 IgG (分子量150，000) ImL溶液为例，需加入IOmM生物素溶液约27 μ L。3、检测的灵敏度及动态范围本发明的血清样品西尼罗抗体的蛋白质悬浮芯片定量检测方法与经典的免疫学 ELISA检测方法，结果有着很好的吻合性(相关系数R2 = 0. 964)。同时，悬浮芯片方法灵敏 度为血清滴度4. 9 X 10_6，其高于ELISA方法的检测滴度7. 8 X 10_5，灵敏度增高10倍以上； 并且悬浮芯片方法动态检测范围为4. 9Χ 10_6 2Χ 10_2，其高于ELISA方法动态检测范围 (即7. 8 X 10_5 2 X IO"2) 1个数量级。4、方法的特异性本发明通过选用西尼罗E蛋白为包被抗原，以兔抗西尼罗抗体为待测抗体，以生 物素化的羊抗兔为检测抗体。本研究试验证明，在存在鼠抗登革热IgG、兔抗禽流感Η5血 清、兔抗土拉FopA多克隆抗体、兔抗登革热NS3抗体等干扰抗体存在的条件下，本方法具有 良好的特异性。5、样品的检测能力本发明评价了悬浮芯片方法对人血清的检测能力。通过对人血清的检测，初步证 实了该方法在检测人血清中西尼罗抗体的实用性。
图1为025号微球包被西尼罗E蛋白检测西尼罗抗体示意图；图2为蛋白悬浮芯片方法检测兔抗西尼罗血清剂量_反应标准曲线图；图3为ELISA方法检测兔抗西尼罗血清标准曲线图；图4为蛋白悬浮芯片与ELISA方法检测兔抗西尼罗血清的相关性。
具体实施例方式如图1至图4所示，本发明涉及的检测西尼罗抗体的蛋白悬浮芯片制备方法、检测 及定量方法通过下面的具体实施方式
作进一步说明，但本发明不以任何方式受该实施例的 限定。一、材料1.蛋白悬浮芯片的相关缓冲液(I)PBS 缓冲液(pH7. 4) =NaCl 137mmol/L ；KCl 2. 7mmol/L ；Na2HPO4IOmmo 1/L ； KH2P042mmol/L。用 800mL 蒸馏水溶解 8gNaCl，0. 2gKCl，1. 44g Na2HPO4 和 0. 24g ΚΗ2Ρ04。用 HCl调节溶液的pH值至7. 4，加水至1L。分装后在15psi (1. 05kg/cm2)高压蒸汽20分钟， 或过滤除菌，保存于室温。(2)微球清洗液:PBS(ρΗ7· 4) ,0. 05% TWEEN-20。(3)微球活化缓冲液 IOOmM NaH2PO4 :3g NaH2PO4, 5N NaOH 1. 5mL，定容于 25OmL, pH 6. 2。(4)微球包被缓冲液 0· 05M MES，pH 5. 0 2. 44g MES，5N NaOHO. 15mL，定容于
5250mL。(5)微球保存液PBS-TBN :PBS，0. 1%BSA,0. 02% TWEEN,0. 05%叠氮化物，pH 7. 4。(6)微球封闭液 PBS-BN =PBS, 1% BSA,0. 05%叠氮化物，ρΗ7· 4。(7)检测缓冲液:PBS, 1 % BSA, ρΗ7· 4。(8)抗体稀释液 PBS，ρΗ7· 4。。(9)微球稀释液:PBS,1% BSA, ρΗ7· 4。(10)样品稀释液 PVX :PBS,0. 5% PVA,0. 8% PVP ；(11)生物素化检测物稀释液PBS-TBN(PBS，0. 1% BSA, 0. 02% TWEEN-20,0. 05% NaN3, pH7. 4)。(12) SA-PE 稀释液:PBS (ρΗ7· 4), 1% BSA。2.抗原与抗体本发明所使用的抗原为西尼罗E蛋白，可购自军事医学科学研究院微生物流行病 研究所。本发明所使用检测抗体为兔抗西尼罗IgG，可购自军事医学科学研究院微生物流 行病研究所，检测抗体为生物素化羊抗兔IgG和生物素化SPA，所述的羊抗兔IgG可购自北 京鼎国生物技术公司、SPA可购自Sigma公司。二、待测样品的制备1、目标分析物样品的制备目标分析物为兔抗西尼罗IgG，干扰样品或作为方法特异性测试的样品是目标检 测物外的其它抗体或其它蛋白质，包括鼠抗登革热IgG、兔抗禽流感H5血清、兔抗土拉抗 体、兔抗登革热NS3抗体、BSA、酪蛋白、胰蛋白胨等。将上述待分析样品均溶于样品稀释液 中，-4°C保存。兔抗西尼罗IgG的储备液滴度为0.08。比较实验中，相同样品用于ELISA和 悬浮芯片的检测。将待分析的兔抗西尼罗IgG用样品稀释液以4倍倍比系列稀释为不同浓度样品， 以绘制样品检测剂量-反应的标准曲线，其中几个样品浓度低于检测的敏感度，高浓度样 品应使编码微球的结合位点处于饱和状态。2、人血清样本的处理将人血清样本用样品稀释1 10稀释，例如人血清样本5 μ L加样品稀释液50 μ L 混勻后，作为待检样品进行悬浮芯片方法的检测。实施例1、检测西尼罗抗体的蛋白质悬浮芯片的制备
1、捕获抗原包被编码微球本发明采用的025号编码微球购自美国Bio-Rad公司，编码微球用于标记可以捕 获西尼罗抗体的西尼罗E蛋白抗原，即利用西尼罗E蛋白包被微球。Α、编码微球的活化取100 μ L (1. 25 X IO6个)编码微球到1. 5mL离心管中，14000 X g离心，小心吸出并 弃去上清液。加入100 μ L的微球清洗缓冲液悬�。鸬床⒊�14000 Xg离心，小心吸出 并弃去上清液。加入100 μ L的微球活化缓冲液，接着先加入10 μ L新鲜配置的EDC(50mg/ mL)，再加入10 μ L新鲜配置的50mg/mL的Sulfo-NHS，高速震荡30秒后用铝箔包裹，在室 温震摇20分钟。加入150 μ L的PBS (ρΗ7· 4)，震荡后，14000 X g离心，小心吸出并弃去上清
6液。加入100 μ L的PBS (ρΗ7· 4)悬浮编码微球。B、用抗原包被编码微球取捕获抗原西尼罗E蛋白抗原1 50 μ g加入到活化后的编码微球中，用PBS缓 冲液定容至500 μ L，室温震摇2小时。14000 Xg离心，小心吸出并弃去上清液。用500 μ L 的PBS缓冲液洗一次，14000 Xg离心，小心吸出并弃去上清液。加入250 μ L的封闭缓冲液 悬浮编码微球，在室温震摇30分钟，14000Xg离心，小心吸出并弃去上清液。加入500 μ L 的微球保存液洗涤编码微球，16000Xg离心，小心吸出并弃去上清液。最后用150yL的微 球保存液悬浮编码微球，于4°C避光保存备用。C、包被微球的计数吸取适量微球，稀释后，用血球计数板(0. 10mm;l/400mm2)在普通显微镜下计数。 根据公式(每个大格数Xio4X稀释倍数X体积(mL))计算微球数量。2、检测物标记生物素A、生物素的标记分别配制好浓度为IOmM生物素溶液和2mg/mL的待标记抗体溶液，将计算好体 积的生物素加入到待标记物溶液中，在室温震摇30分钟(或冰上2小时)，过柱脱盐后分 装，-20°C冻存备用。B、抗体的用量以标记2mg/mL的IgG (分子量150，000) ImL溶液为例，需加入IOmM生物素溶液约 27 μ 1。实施例2、悬浮芯片制备法条件的优化1、微球包被抗原包被量的选择分另Ij以 1 μ g、2y g、4y g、6y g、8y g、10y g、12y g、16y g、20y g、24y g 的量包被 100 μ L编码为025号的微球。经检测效果比较，以1 24μ g/1. 25 X IO6个编码微球或 0. 2 96ng/2500 5000个微球/测试，包被效果最好，显微镜下计数后避光冷藏保存待 用。如图1所示，包被西尼罗E蛋白抗原的025号微球均落在其正确检测区域内，并且获得 高信噪比结果(MFI值远大于2000)，说明优化的悬浮芯片检测系统可成功用于西尼罗抗体 的检测。2、生物素化检测物的优化本发明分别用氨基活性的生物素，例如LC-酰胼(hydrazide)-生物素和羧基活性 的生物素，例如Sulfo-NHS-生物素和SH-活性的生物素标记检测抗体，经质控过程检测效 果比较，本实验中Sulfo-NHS-生物素标记检测物检测效果较好，检测效果的方法采用本领 域的常规方法或按照制造商的产品说明书所述的方法。本发明人经过试验验证，发现2mg/mL生物素化的抗体羊抗兔以1 500稀释 作为检测物进行检测兔血清中的西尼罗抗体，检测结果显示生物素化检测物Bio-羊抗 兔抗体可获得高检测值和低背景值的检测效果；2mg/mL生物素化的检测物Biotin-SPA 以1 2500稀释作为检测人血清中西尼罗抗体的检测物，检测结果显示生物素化检测物 Biotin-SPA可获得高检测值和低背景值的检测效果。实施例3、悬浮芯片样品制备、检测及结果判定1、待测样品制备
用样品稀释液将待测样本配制为不同浓度样本进行蛋白悬浮芯片检测。2、样品的检测及结果判定检测过程全部反应均在96孔滤板上进行，检测过程如下1)每孔加入50 μ L含相应编码微球的工作溶液，用清洗液洗涤并用真空泵抽滤；2)加入50 μ L检测样品，混勻后室温避光震摇30分钟，用清洗液洗涤并抽滤；3)加入50 μ L适当浓度的用检测物稀释液稀释后的生物素化检测物，混勻后室温 避光震摇30分钟，洗液洗涤并真空泵抽滤；4)加入50 μ L的SA-PE，混勻后室温避光震摇10分钟。洗液洗涤并真空泵抽滤；5)加入125 μ L的检测缓冲液，经蜗旋重悬混勻；6)用悬浮芯片系统读取MFI数值并分析数据。3、检测结果判定根据试验研究结果与相关研究报道，本发明定义蛋白质悬浮芯片方法检测西尼罗 抗体的最低检出限(L0D值)为检测荧光强度临界值(Cutoff)对应的检测物浓度。其中， Cutoff的定义是采用空白对照样品(Blank)荧光检测信号MFI均值加3倍标准差(SD)，即 Cutoff值为=MFI (空白对照)+3倍标准差。若检测结果高于LOD对应荧光强度值则判定 为西尼罗抗体检测结果阳性；若检测结果低于LOD对应荧光强度值则判定为西尼罗抗体检 测结果阴性。实施例4、悬浮芯片对西尼罗蛋白抗原特异性检测应用悬浮芯片检测方法分别对兔抗西尼罗IgG、鼠抗登革热IgG、兔抗禽流感H5血 清、兔抗土拉抗体、兔抗登革热NS3抗体、BSA、酪蛋白、胰蛋白胨等进行检测，根据实施例3 中检测结果判定标准，仅兔抗西尼罗IgG为阳性，其余干扰抗体或蛋白均为阴性。说明本发 明所建立的西尼罗抗体的悬浮芯片检测方法与其它测试抗体均不发生交叉反应或非特异 反应。实施例5、悬浮芯片定量检测模型的建立1、兔抗西尼罗IgG标准曲线样品制备用样品稀释液将兔抗西尼罗IgG标准品由滴度为0. 08以4倍倍比梯度稀释至滴 度为3. 125X 10_7成系列浓度样品。2、剂量_反应标准曲线的绘制按照实施例3中的检测方法检测上述系列浓度样品，并根据悬浮芯片系统检测结 果绘制剂量_反应标准曲线(如图2所示)。其中，X轴代表滴度，Y轴代表悬浮芯片仪检 测的荧光值(MFI)。每个数据代表3次的检测结果平均值，坐标轴以对数-对数关系设定， 图2中兔抗西尼罗血清的滴度分别为=Sl 3. 125X IO"7, S2 :1· 25X IO"6, S3 :5Χ10_6，S4 2Χ 10_5，S5 :8. OX 10_5，S6 :3. 12Χ 10_4，S7 :1. 25Χ 10_3，S8 :5Χ 10_3，S9 :2Χ 10_2，SlO :0. 08。悬浮芯片系统根据检测结果拟合兔抗西尼罗IgG剂量_反应标准曲线方程FI = -2. 07898+(13723. 6+2. 07898) / [1+(Conc/0. 141595)37795J0'7153133、悬浮芯片检测兔抗西尼罗IgG的最低检测限和动态范围根据最低检出限定义和剂量_反应标准曲线方程，本发明即蛋白悬浮芯片方法检 测兔抗西尼罗IgG的最低检测限即血清滴度为0. 000035。本发明定义最高检出限为使编码微球的结合位点处于饱和状态的检测物浓度。根
8据标准曲线随着兔抗西尼罗IgG浓度的升高，其对应的MFI值也随之递增，当兔抗西尼罗 IgG滴度度超过0. 08时，抗原抗体的免疫反应达到饱和状态，MFI值开始进入平台期，说明 样品中的待检物浓度过高，需要将样品稀释后再检测。因此，根据最低检出限与最高检出限可以判定本发明即悬浮芯片定量检测兔抗西 尼罗血清的动态范围为8. OX 1(Γ50. 08。实施例6、蛋白悬浮芯片方法与ELISA方法检测西尼罗血清的比较1、生物素-亲和素ELISA (BAS-ELISA)检测方法作为对比，生物素-亲和素ELISA采用包括下列步骤1)向普通ELISA微孔板每 孔加入50 μ L用PBS缓冲液稀释的西尼罗E蛋白1 50 μ g，4°C静止过夜；2)加入封闭液，在37°C封闭2小时；3)洗液洗3次，拍干；4)加入检测样品，每孔50 μ L，室温放置40分钟；洗液洗3次，拍干；5)加入适量生物素化检测物，每孔50 μ L，室温放置30分钟；洗液洗3次，拍干；6)加入适量SA/HRP (辣根酶标记链霉亲和素)，50 μ L/孔，室温放置3分钟；洗液 洗3次，拍干；7)加入TMB显色液(可溶型单组分TMB底物溶液)显色，50 μ L/孔，室温放置10 分钟；8)用 2M H2SO4 终止反应；9)应用酶标仪测读A450nm数值。2、样品的悬浮芯片检测方法采用间接法测抗体的免疫学检测模式，检测过程中全部反应均在96孔滤板上进 行。1)每孔加入50 μ L含相应编码微球的工作溶液，洗液洗涤并用真空泵抽滤2次；2)加入50μ L检测样品，混勻后室温避光震摇30分钟，用清洗液洗涤并抽滤3次；3)加入50 μ L适当浓度的用抗体稀释液稀释后的生物素化抗体，混勻后室温避光 震摇30分钟，洗液洗涤并真空泵抽滤3次；4)加入50 μ L的SA-PE，混勻后室温避光震摇10分钟。用清洗液洗涤并真空泵抽 滤3次；5)加入125 μ L的检测缓冲液，经蜗旋重悬混勻；6)用Bio-Plex悬浮芯片系统读取MFI数值并分析数据。3、两种检测方法的灵敏度和动态范围及相关性的比较制备的相同一组兔抗西尼罗血E蛋白血清样品用样品稀释液4倍比稀释同时应用 悬浮芯片和ELISA方法进行检测。绘制ELISA方法检测兔抗西尼罗血清的标准曲线(图中 横坐标为样品滴度，纵坐标为吸光度值，坐标轴取对数_对数关系)，并与悬浮芯片方法结 果进行比较。根据两种方法标准曲线悬浮芯片方法如，灵敏度为4. 9Χ 10_6(血清滴度)，线性 检测范围4. 9 X 10_6 2 X 10_2 ；ELISA方法如图3所示，灵敏度为7. 8 X 10_5 (血清滴度)，线 性检测范围7.8Χ10_5 2Χ10_2。可以得出结论检测相同兔抗西尼罗血清样品，蛋白悬浮 芯片方法比ELISA方法具有更高的检测灵敏度，即高10倍；并且具有更宽的动态检测范围，
9即高1个数量级。另外，将两种方法检测结果在10_6 10_2范围内进行比较，如图4所示可以判定蛋 白悬浮芯片方法与ELISA方法有良好的相关性，相关系数为0. 964。实施例7、人血清样品的检测1、人血清样品的准备将人血清用样品稀释液1 10稀释(人血清样本5μ L加样品稀释液50μ L混 勻)后用于蛋白悬浮芯片检测。2、人血清样品的检测1)每孔加入50 μ L含相应编码微球的工作溶液，用清洗液洗涤并用真空泵抽滤；2)加入50 μ L待检测人血清样品，混勻后室温避光震摇30分钟，用清洗液洗涤并 抽滤；3)加入50 μ L适当浓度的用抗体稀释液稀释后的生物素化SPA，混勻后室温避光 震摇30分钟，洗液洗涤并真空泵抽滤；4)加入50 μ L的SA-PE，混勻后室温避光震摇10分钟。洗液洗涤并真空泵抽滤；5)加入125 μ L的检测缓冲液，经蜗旋重悬混勻；6)用悬浮芯片系统读取MFI数值，根据标准曲线，确定待检测人血清中西尼罗抗 体的浓度。经过多次重复试验，生物素化SPA稀释比例选用1 2500稀释，SA-PE稀释比例选 用1 300稀释，经过对94份人血清的检测，所得的MFI值的均值与其标准差的3倍之和为 作为判断阴阳性的界值，即C utoff值为1103，检测得到的MFI值如果大于1103，即血清中 的西尼罗浓度过高，可视为西尼罗抗体阳性可能被西尼罗病毒感染，如果MFI值小于1103， 即血清中的西尼罗抗体浓度低正常值可判断为西尼罗抗体阴性，未感染西尼罗病毒或西尼 罗病毒隐性携带者。
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权利要求
一种检测血清样本中西尼罗抗体的蛋白悬浮芯片，其特征在于，该芯片包括编码微球，作为包被编码微球抗原的西尼罗E蛋白，生物素标记的二抗和SPA作为检测物，链亲和素 藻红蛋白和相关缓冲溶液。
2.一种检测西尼罗抗体的蛋白悬浮芯片的制备方法，其特征在于，该方法具体为在 相关缓冲溶液中，编码微球用西尼罗E蛋白抗原包被，用生物素标记的检测物为羊抗兔IgG 或/和Biotin-SPA、用链亲和素-藻红蛋白作为信号检测物。
3.如权利要求2所述的检测西尼罗抗体的蛋白悬浮芯片的制备方法，其特征在于，所 述编码微球优选为025号编码微球。
4.一种采用蛋白悬浮芯片检测血清样本中西尼罗抗体的间接免疫学检测方法，其特征 在于，该方法包括下列步骤1)将西尼罗E蛋白抗原作为捕获抗原来包被编码微球；2)向检测载体内加入含已包被捕获抗原编码微球的工作溶液，用清洗液清洗；3)加入待测血清样品，孵育后清洗；4)加入用生物素标记的二抗，孵育后清洗；5)加入链亲和素_藻红蛋白，孵育后清洗；6)加入检测缓冲液后混合均勻；7)用悬浮芯片系统读取平均荧光强度数值并分析数据判定检测结果。
5.如权利要求4所述的检测方法，其特征在于，采用生物素标记的SPA作为检测物，并 且其与西尼罗E蛋白组合组成间接法检测体系。
6.如权利要求4所述的检测方法，其特征在于，所述步骤1)中包被所述编码微球的西 尼罗E蛋白抗原用量为0. 1 240μ g/1. 25 X IO6个编码微球或0. 02 960ng/2500 5000 个微球/测试。
7.一种采用蛋白悬浮芯片定量检测血清样本中西尼罗抗体的方法，其特征在于，该方 法包括下列步骤1)加入的阳性检测样品或标准品经梯度倍比稀释；2)将系列稀释样品在悬浮芯片系统中检测读取对应荧光值；3)制作样品浓度对应荧光值的剂量-反应曲线；4)用分析软件拟合剂量_反应曲线和方程；5)根据剂量_反应曲线判定动态检测范围，根据剂量_反应方程判断样本中西尼罗抗 体的浓度。
8.如权利要求7所述的方法，其特征在于，所述步骤1)中梯度倍比稀释为4倍。
9.如权利要求7所述的方法，其特征在于，所述步骤1)中加入的阳性检测样品为兔抗 西尼罗抗体。
10.如权利要求7所述的方法，其特征在于，所述步骤2)中采用2mg/mL生物素化的检 测抗体Bio-羊抗兔抗体以1 500稀释作为检测物进行检测。
全文摘要
本发明涉及一种检测血清样本中西尼罗抗体的蛋白悬浮芯片及其制备方法和使用方法。本发明的方法检测能力好、灵敏度高、特异性强、动态范围宽，并建立了以西尼罗抗体为代表的病毒性抗体蛋白悬浮芯片检测的开放性检测模式化平台。
文档编号G01N33/543GK101936988SQ20101023566
公开日2011年1月5日 申请日期2010年7月23日 优先权日2010年7月23日
发明者姚李四, 孙肖红, 杨宇, 杨永莉, 王静, 胡孔新 申请人:中国检验检疫科学研究院
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