专利名称：脐血来源的间充质干细胞表面差异膜蛋白的检测方法
技术领域：
本发明涉及一种干细胞差异膜蛋白的检测方法，特别涉及脐血来源的间充质干细 胞(Mesenchymal stem cells，MSCSs)和胎盘来源的间充质干细胞表面差异膜蛋白的检测 方法。
背景技术：
干细胞(stem cells, SC)是一类具有自我复制能力的多潜能细胞，在一定条件下， 它可以分化成多种功能细胞。间充质干细胞(MSCSs)是干细胞家族的重要成员，最早来源 于骨髓，因其具有强大的增殖能力和多向分化潜能、造血支持和促进干细胞植入、免疫调控 等特点使其在组织工程、细胞治疗和基因治疗等方面具有广泛的临床应用前景。近年来，随 着人们对间充质干细胞生物学特性及功能的深入研究，已成功地从骨髓、外周血、肌肉、月旨 肪、脐血、脐带及胎盘等组织中分离并鉴定出MSCSs。其中人脐血MSCSs具有极其一致的生 物学特性，且可能更原始，增殖分化能力更强，易保存，免疫反应性低。胎盘来源MSCSs易 分离培养，增殖迅速，可以分化为3个胚层来源的细胞系，并有向伤处迁移的能力；同时胎 盘在临床上为废弃物，取材几乎不受限制，且不涉及伦理问题；因此也是很好的实验材料和 细胞治疗载体。因此，本发明选择这两种细胞作为被检测对象。一般认为流式细胞仪检测，脐血MSCS表达CD 29、CD 44、CD54、CD58、CD90、C D 95,C D166 等免疫表型，不表达 CD14、CD34、CD40、CD45、CD50、CD68、CD80、CD8 6、CD117 和 ⑶152等免疫表型。胎盘MSCS表达⑶29、⑶44和⑶105，不表达⑶34、⑶45、⑶19。但脐血 和胎盘MSCS表面标志，不同文献报到不尽相同。脐血和胎盘MSCS都没有特异的细胞表面 标志。脐血是胎儿娩出、脐带结扎并离断后残留在胎盘和脐带中的血液。其分离出的MSCS 和胎盘MSCS表面表达的差异有何不同，目前还没有资料标明，但这种差异在发育生物学上 有着重要意义，本专利就是采用一种新的技术手段，来揭示脐血和胎盘中分离出的MSCS表 面蛋白表达差异。
发明内容
本发明要解决的问题是，克服现有技术中的不足，提供一种间充质干细胞表面差 异膜蛋白的检测方法，该方法可用于检测脐血和胎盘两种不同来源的间充质干细胞表面的 特殊的膜蛋白标志。双向凝胶电泳是蛋白质组研究中的主流技术，但该技术的重复性和敏感 性不佳，且缺乏对蛋白质点的精确定量，近年来出现的双向荧光差异显示凝胶技术 (two-dimensional difference gel electrophoresis, 2D-DIGE)克月艮了传统的双向 疑胶 电泳技术的上述缺点，2D-DIGE在传统双向凝胶电泳技术的基础上，结合多重荧光分析的方 法，在同一块胶上分离多个由不同荧光标记的样品，并第一次引入了内标的概念，软件自动 根据每个蛋白点的内标对其表达量进行校准，保证所检测到的蛋白丰度变化是真实的，极 大地提高了结果的准确性，可靠性和重复性，避免了使用不同凝胶时在操作上的偶然性和不平行性。因此我们我们通过双向荧光差异凝胶电泳对不同来源的膜蛋白进行分析，来研究 脐血和胎盘MSCS表面差异蛋白，在此基础上一方面可制备单抗，进行MSCS的鉴定，另一方 面，揭示两者在发育生物学上的关系。为解决技术问题，本发明是通过如下的技术方案实现的
提供一种脐血来源的间充质干细胞表面差异膜蛋白的检测方法，包括以下步骤
(1)间充质干细胞的分离和培养
脐血来源间充质干细胞取新鲜脐血，使用Ficoll分离液进行密度梯度离心，收集白 膜层，洗两遍，收集细胞，常规培养；
胎盘来源间充质干细胞取新鲜胎盘组织剪碎，胶原酶消化，收集消化得到的细胞悬 液，使用Ficoll分离液进行密度梯度离心，收集白膜层，洗两遍，收集细胞，常规培养； 所有间充质干细胞均培养至对数生长期，用于移植；
(2)间充质干细胞膜蛋白的提取
反复冻融法使得细胞破碎，然后通过梯度离心得到含有膜蛋白的组分；
(3)双向荧光差异凝胶电泳法获取膜蛋白凝胶图谱
通过双向荧光差异凝胶电泳法(2D-DIGE)，得到Cy2、Cy3及Cy5荧光素标记的不同种类 的膜蛋白凝胶图谱，采用DeCyder 2D图像分析软件进行分析，识别两组间差异表达的蛋白 质点；
(4)质谱分析及验证
选取差异蛋白质点，胶内酶解后进行质谱分析，并对MareixScience公司的Mascot 网上数据库查询，鉴定差异蛋白质，寻找不同来源干细胞的特殊表面标志，然后采用 Western-Blot 验证。本发明的有益效果在于
本发明首次将2D-DIGE用来对干细胞膜表面特殊差异表面标志的检测，可以在同一块 凝胶上对不同样品中蛋白质进行定量比较分析，在每块凝胶中加入了内标，DIA和BVA软件 可以自动地根据每个蛋白质点的内标对其表达量进行校准，最大程度上降低了不同批次胶 与胶之间的误差，反应了蛋白质的真实改变程度，降低了假阳性率及假阴性率。
具体实施例方式下面结合具体实施例子，对本发明的技术方案详细描述。首先声明，虽然本发明中涉及使用新鲜胎盘组织和新鲜脐血，但针对的只是已脱 离人体的新鲜脐带组织和新鲜脐血，其具体获取过程本身并不属于本发明的内容。本发明 对其制备方法的详细描述只是为了更清楚地介绍生物材料的准备过程，但该描述并不意味 着相关技术手段也属本发明要求保护的内容。(一)间充质干细胞细胞的分离培养 脐血MSCSs的分离培养
无菌条件下取正常足月剖腹产孕妇的脐带血50ml左右，按1 :1用磷酸盐缓冲液(PBS) 进行稀释，将稀释后的脐血沿管壁缓慢加入含有Ficoll-PaqueTM PLUS人淋巴细胞分离液 (其相对密度为1.077g/L)的离心管中，进行梯度离心(20°C，2000rpm，25min)。离心后，吸取管中白膜层，PBS洗涤两次，获得脐血单个核细胞。MSCS专用培养基重悬，接种于6孔培 养板中，置于37°C、5%C02饱和湿度培养箱中，行常规培养及传代。胎盘MSCSs的分离培养
无菌条件下将胎盘用预热的PBS充分洗涤去血渍后，剪碎，剪成尽可能小的组织块，置 于0. 1%四型胶原酶中消化，37°C消化，30min,过滤，用PBS冲洗，收集消化液和冲洗液，1200 rpm离心10 min，收集细胞沉淀，用5mlPBS重悬，加至5ml含有Ficoll-PaqueTM PLUS人淋 巴细胞分离液(其相对密度为1.077g/L)上，进行梯度离心(20°C，2000rpm，25min)。离心 后，吸取管中白膜层，PBS洗涤两次，收集细胞。MSCS专用培养基重悬，接种于6孔培养板 中，置于37°C、5%C02饱和湿度培养箱中，行常规培养及传代。(二)分离细胞膜蛋白的方法
1、冰上刮下细胞后将细胞溶于有蛋白酶抑制剂的缓冲液A (ImMkcl, 5mMNacl, 3mM Mgcl2, 50mM Hepes, ImM DTT, 0. 5 μ g/ml Leup印tin, 20 μ M pmsf (PH=7. 4))中，于室温与液 氮罐中反复冻融2次。2、5000转4度离心，驱除核及未裂解的细胞。3、取上清12000转4度离心10分钟取沉淀溶于有蛋白酶抑制剂的缓冲液 B (ImMkcl, 5mMNacl, 3mM Mgcl2, 50mM Hepes, ImM DTT,0.5 μ g/ml Leupeptin,20 μ M PMSF (ΡΗ=7· 4))中。4、12000转4度离心10分钟取沉淀溶于有蛋白酶抑制剂的缓冲液C (0.5 μ g/ml Leupeptin, 20 μ M PMSF, 50mMTris-cl (ΡΗ=7· 0))中提取后测蛋白浓度，SDS-PAGE 电泳，分装 后-20度保存备用。(三)膜蛋白浓度测定
采用GE公司专门针对蛋白质组学研究设计的蛋白质抽提2D Quant Kit定量试剂盒。 其基本原理是将蛋白质沉淀后，去除裂解液，再用含铜离子的溶液重溶蛋白质沉淀，未与蛋 白质结合的铜离子可与显色工作液反应而显色，显色的深浅与蛋白质的浓度成反比。(四)2D_DIGE
1、内标样品制备2个样品(N1、N2)各取50 μ g，体积10μ 1，加入到同一个印pendorf 管里，震荡混勻，离心。然后50 μ g每管分装成2管。2、储存液的制备把染料从-20°C的冰箱中取出，轻旋，室温静置5min，吸5μ 1 DMF至染料管中，震荡离心，配制成lnmol/μ 1储存液。3、工作液的制备首先取1. 8μ 1 DMF到印pendorf管，然后吸取1. 2μ 1储存液到 一个印pendorf管中，震荡离心即配成400 pmol/μ 的工作液。避光保存。4、样品标记将每1 μ 1工作液和50 μ g蛋白的比例进行荧光标记。整个操作中避 光进行。冰上避光放置30 min，每管蛋白中加入Ιμ 赖氨酸终止标记反应
5、样品准备将分别用Cy2、Cy3和Cy5标记的样品加入到同一印pendorf管中，震荡混 勻，短暂离心。避光操作。每块胶上加入等体积的2X上样缓冲液(7mol/L尿素，2mmol/L 硫脲，4%CHAPS，65mmol/L DTT)冰上静止10 min，准备上样。表1标记成分
胶数目 |CY2|CY3|CY5
T 50wg (两种蛋白各25wg)Ml来源干细胞膜蛋白50 Pg ■脐带来源干细胞膜蛋白50 Pg
2" |50wg (两种蛋白各25wg) I脐带来源干细胞膜蛋白50 Pg |胎盘来源干细胞膜蛋白50 μ g6、等电聚焦
分别将胶1 2中Cy2、Cy3, Cy5三种荧光标记样品混合在一起。加入适量水化液和 (0. 5%v/v)IPG buffer (pH 4_7)振荡混勻使各胶上样的总体积为450 μ 1，将蛋白溶液吸至 IPG胶条槽内，将IPG干胶条(Ph4-7NL，24cm)放入含蛋白的胶条槽中，覆盖一层Immobiline Drystrip覆盖液约2ml，置于IPGphor等电聚焦仪上，设置程序，使水化和聚焦均在20°C下 进行，其中于30V低电压水化12h，然后经过IOOV 0. 5h、500V 0.5h、1000V lh、8000V lh，最 后稳定在8000V下进行等电聚焦8h。 7、平衡
用镊子夹出胶条，超纯水冲洗后，在滤纸上吸干，再以超纯水冲洗，滤纸吸干，然后 用镊子夹住胶条以正极端(即酸性端)向下，负极端(即碱性端)向上，放入用来平衡的试 管中(镊子所夹的是碱性端，酸性端留有溴酚兰作为标记)，用平衡液A (50mmolTriS-HCL, pH8. 8,6mmol/L Urea，30%甘油，1%SDS，0. 2%DTT，0· 1%溴酚蓝)，平衡液B (50mmolTriS-HCL， ρΗ8· 8，6mmol/L Urea, 30% 甘油，1%SDS，3% 碘乙酰胺，0. 1% 溴酚蓝)先后平衡 15min. 8、第二向垂直SDS-PAGE电泳
将IPG胶条从平衡缓冲液中移出，用镊子夹住胶条的一端使胶面完全浸末在IX电泳 缓冲液中。然后将胶条胶面朝上放在凝胶的长玻璃板上，轻轻将胶条推至PAGE胶面上，胶 面和胶条要紧密结合，再将SDS-PAGE凝胶转移到灌胶架上，在凝胶的上方加入0. 5%低熔点 琼脂糖封胶液。5W/胶电泳30min，然后以20W/胶恒功率电泳，直至溴酚兰指示线到达凝胶 底边处停止电泳。9、扫描分析图像
Typhoon多功能激光扫描仪扫描SDS-PAGE凝胶，扫描后的图像用DeCyderTM2D6. 5分析 图像，找出差异蛋白点。10、加大上样量建立制备胶并用考马斯亮蓝染色
将各组蛋白混合到ΙΟΟΟμ g，进行双向电泳，再用考马斯亮蓝染色，用ddH20洗涤两次， 每次15min，倒入考马斯亮蓝染蓝染液(0. 25%考马斯亮蓝R-250，溶解于50%甲醇和10% 乙酸中)。摇染过夜(约13h)，弃掉考染液，用蒸馏水洗涤3次，再加入10%的乙醇脱色液 250ml，摇床上脱色至背景清晰为止，扫描保存图像。(五)质谱样品制备
1、根据DeCyder2D图像分析软件的分析结果在制备胶上寻找相应的蛋白点，用修剪 后的Iml移液器的Tip吸头从凝胶上切取蛋白质点，装入Eppendorf管中；
2、用50%ACN (乙腈VlOOmM NH4HC03 (200ml, pH8. 0)将小胶块浸洗 lOmin，反复 3 次； 最后吸去洗液；
3、用SpeedVac将胶块抽干；
4、将胶块浸入IOmMDTT/50mM NH4HC03 (pH8. 0)(通常50ml)中，并温育Ih (温度逐 渐升高到65°C)；之后吸去浸液；
5、将胶块浸入55mM iodoacetamide/50mM NH4HC03 (pH8. 0)(比 5Oml 稍多)中，于室 温下在暗室中温育30min ；之后吸去浸液；
6、将胶块用100mlIOmM NH4HC03浸洗IOmin ；吸去NH4HC03溶液后，再用100ml ACN浸 洗 IOmin ；7、重复第6步的操 作一遍；
8、吸去上清液，用SpeedVac将胶块抽干5min ；
9、向装有胶块的Eppendorf管中加入5ml稀释后的Promegatrypsin酶液，让酶液被 胶块吸收；
10、加入足量的IOmMNH4HC03以覆盖吸胀的胶块(约35ml)；
11、于37°C温育3h或过夜；
12、加入等体积的60%ACN / 5% formic acid (约40ml)，超声波振荡lOmin，从而达 到抽提的效果。离心2min，收集并保存上清液。向剩下的胶块再加入约40ml 60%ACN / 5% formic acid，重复刚才的操作，并保存上清；
13、将收集保存的上清液抽干约Ih；
14、用ZipTipC18 脱盐；
15、做MALDI分析前，将抽干的样品溶解在50%ACN/0.1%TFA中，-20°C保存。(六)质谱分析
将制备好的点样板放入 Applied Biosystems Voyager-DE STR 4307 MALDI-TOF-MS 质谱 仪中进行分析，采用反射模式，正离子模式下测定，离子源加速电压为20000 V，反射电压比为 1. 12，N2激光波长337nm，脉冲宽度为3 ns，离子延迟抽提100 nsec，真空度4xlO-7Torr，采 集质量范围m/z800-3000道尔顿，质谱信号单次扫描累加100次，使用ACTH作为外部标准，胰 蛋白质酶自切降解峰(842. 510,2211. 105)作为内部标准校正，获得肽质量指纹图(PMF)。(七)数据检索
MALDI-TOF-MS质谱图解谱采用MatrixScience公司的Mascot Distiller软件进行， 先调用Data ExploreTM软件处理AB公司MALDI-TOF-MS质谱产生的原始文件。数据库查 ill^tM MareixScience 白勺 Mascot, 其查询网址为 http//www. matrixscience. com/ cgi/search_form. pl F0RMVER=2&SEARCH=PMF。数据库检索参数为Your name 和 E-Mail 内输入相应的名字和E-mail地址，数据库为NCBInr，物种分类(Taxonomy)为人类(Homo sapiens)，酶为Trypsin，允许的未酶切位点为1，固定修饰(Fixed modifications)为碘乙 酰胺Carbamidomethyl (C)修饰，可变修饰不�。钠稳莶钗�100ppm，Mass values为MH+， 选择Monoisotopic，选择直接输入Mascot Distiller产生的临时文件或单同位素峰的列 表(Peak Lists)即可进行数据库检索。(A) western-blot 蛋白验证 配制凝胶，分离胶为10%，浓缩胶为5%，
1、上样，每孔蛋白量为40yg；
2、电泳，电压为150V,时间为90min；
3、转膜，电流为400mA,时间为IOOmin；
4、封闭2h，封闭液为含5%脱脂奶粉的IXTBS溶液；
5、一抗(RON1:8000 ；Actin 1 800) 4°C冰箱过夜；
6、含0.05%吐温的IXTBST洗膜4次，IOmin/次；
7、二抗(1:5000)室温反应2h；
8、含0.05%吐温的IXTBST洗膜5次，IOmin/次；
9、ECLAB液显色，X光片曝光30秒。
权利要求
1.脐血来源的间充质干细胞表面差异膜蛋白的检测方法，包括以下步骤(1)间充质干细胞的分离和培养取新鲜脐血，使用Ficoll分离液进行密度梯度离心；收集白膜层，洗两遍，收集细胞， 常规培养；取新鲜胎盘组织，剪碎，胶原酶消化，收集消化得到的细胞悬液；使用Ficoll分离液进 行密度梯度离心，收集白膜层，洗两遍，收集细胞，常规培养； 所有间充质干细胞均培养至对数生长期，用于移植；(2)间充质干细胞膜蛋白的提取反复冻融法使得细胞破碎，然后通过梯度离心得到含有膜蛋白的组分；(3)双向荧光差异凝胶电泳法获取膜蛋白凝胶图谱通过双向荧光差异凝胶电泳法，得到Cy2、Cy3及Cy5荧光素标记的不同种类的膜蛋白 凝胶图谱，采用DeCyder 2D图像分析软件进行分析，识别组间差异表达的蛋白质点；(4)质谱分析及验证选取差异蛋白质点，胶内酶解后进行质谱分析，并对MareixScience公司的Mascot 网上数据库查询，鉴定差异蛋白质，寻找不同来源干细胞的特殊表面标志，然后采用 Western-Blot 验证。
全文摘要
本发明涉及干细胞差异膜蛋白的检测方法，旨在提供一种脐血来源的间充质干细胞表面差异膜蛋白的检测方法。该方法包括间充质干细胞的分离和培养、间充质干细胞膜蛋白的提取、双向荧光差异凝胶电泳法获取膜蛋白凝胶图谱、质谱分析及验证。本发明首次将2D-DIGE用来对干细胞膜表面特殊差异表面标志的检测，可以在同一块凝胶上对不同样品中蛋白质进行定量比较分析，在每块凝胶中加入了内标，DIA和BVA软件可以自动地根据每个蛋白质点的内标对其表达量进行校准，最大程度上降低了不同批次胶与胶之间的误差，反应了蛋白质的真实改变程度，降低了假阳性率及假阴性率。
文档编号G01N27/447GK102095778SQ20111000189
公开日2011年6月15日 申请日期2011年1月6日 优先权日2011年1月6日
发明者俞炯, 曹红翠, 李兰娟 申请人:浙江大学
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